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Novogene

서비스

인간 전엑솜 시퀀싱 (hWES)

전장 엑솜 시퀀싱 (Whole Exome Sequencing) 은 차세대 시퀀싱 기술 (Next-Generation Sequencing, NGS) 을 활용하여 전장 유전체 시퀀싱 (Whole Genome Sequencing, WGS) 에 비해 비용 효율적인 대안을 제공합니다.

인간 전장 엑솜 (human whole exome) 은 약 18만 개의 엑손 (exon, 단백질 코딩 영역) 으로 구성되어 있으며, 전체 인간 유전체의 1~2% 에 불과하지만, 멘델 유전 질환 (Mendelian disorders) 과 관련된 변이의 최대 85%가 이 영역에서 발생합니다 1.

이러한 영역을 표적으로 삼아 인간 전장 엑솜 시퀀싱 (hWES) 은 유전체 변이 (genome variants), 생식세포 변이 (germline mutations), 체세포 변이 (somatic mutations), 병리학적 기전 (pathogenic mechanisms) 을 심층적으로 분석할 수 있는 시퀀싱 및 해석 방법을 제공합니다.

hWES 서비스는 유전 질환 관련 변이(genetic disease-related variants), 복합 질환 (complex diseases), 암 연구 (cancer research), 인간 집단 유전학 (human population genetics) 등 다양한 연구분야를 지원합니다.

응용 분야 (Applications)

인간 전장 엑솜 시퀀싱 (human whole exome sequencing) 은 다양한 최첨단 연구 및 임상 질문에 대한 해답을 찾는 데 효과적으로 활용되고 있습니다.

노보진 서비스의 장점 및 특징

사양: DNA 샘플 요구사항

Platform Type

Sample Type

Amount (Qubit®)

Purity

Illumina NovaSeq System

Genomic DNA

≥ 300 ng

≥ 300 ng

A260/280 = 1.8-2.0;

no degradation, no contamination

cfDNA/ctDNA

≥ 30 ng

Fragments should be in multiples of 170 bp,

with no genomic contamination

Genomic DNA from FFPE tissue

≥ 400 ng

Fragments should be ≥ 1000 bp

사양: 시퀀싱 및 분석

Sequencing Platform

Illumina NovaSeq System

Read Length

Paired-end 150 bp

Sequencing Depth

For Mendelian disorder/rare disease: effective sequencing depth above 50× (6G)

For tumor sample: effective sequencing depth above 100× (12G)

Data Analysis

• Data quality control
• Alignment to a reference genome
• SNP and InDel calling
• Somatic SNP/InDel/CNV mutation detection (tumor-normal paired samples)

프로젝트 진행 과정

노보진은 프로젝트의 모든 과정에서 최고 수준의 품질과 전문적인 서비스를 제공하여 연구자들이 신뢰할 수 있는 결과를 얻을 수 있도록 지원합니다. 모든 단계는 엄격한 과학적 기준에 따라 설계되고 수행되며, 시퀀싱 데이터의 정확성과 신뢰성을 보장하기 위해 철저한 품질 관리(QC) 절차가 적용됩니다.

전체 워크플로우는 샘플 준비 및 정량화, DNA 절단 및 라이브러리 제작, 라이브러리 품질 검증, 시퀀싱, 생물정보 분석 등의 주요 단계로 이루어져 있습니다.

프로젝트 진행 과정

[1]https://www.nature.com/articles/jhg2013114

인간 전장 엑솜 시퀀싱(Human Whole Exome Sequencing) 관련 논문

인간 전장 엑솜 시퀀싱 (Human Whole Exome Sequencing, hWES) 은 희귀 멘델 유전 질환 (rare Mendelian disorders), 복합 질환 (complex diseases), 암 (cancer), 및 인간 집단 연구 (human population studies) 에서 단백질 코딩 변이 (protein-coding variants) 를 비용 효율적으로 분석할 수 있도록 지원합니다.

여기에서는 Novogene hWES 서비스를 활용한 주요 학술 논문 (outstanding academic publications) 을 요약하여 소개합니다.

Novogene hWES 서비스를 활용한 주요 학술 논문을 소개합니다.

JAMA CardiologyIssue   Date: April 1, 2020IF: 12.794   DOI: 10.1001/jamacardio.2020.0479
Reference information
Wang, X. J., Xu, X. Q., Sun, K., Liu, K. Q., Li, S. Q., Jiang, X., … & Wu, Y. (2020). Association of Rare PTGIS Variants With Susceptibility and Pulmonary Vascular Response in Patients With Idiopathic Pulmonary Arterial Hypertension. JAMA cardiology, 5(6), 677-684.
Annals of the Rheumatic DiseasesIssue   Date: 2020IF: 16.102   DOI: 10.1136/annrheumdis-2019-215533
Reference information
Wang, Y., Chen, S., Chen, J., Xie, X., Gao, S., Zhang, C., … & Lin, J. (2020). Germline genetic patterns underlying familial rheumatoid arthritis, systemic lupus erythematosus and primary Sjögren’s syndrome highlight T cell-initiated autoimmunity. Annals of the Rheumatic Diseases, 79(2), 268-275.
GutIssue   Date: 2019IF: 19.819   DOI: 10.1136/gutjnl-2019-318912
Reference information
Zhang, Q., Lou, Y., Yang, J., Wang, J., Feng, J., Zhao, Y., … & Zhang, X. (2019). Integrated multiomic analysis reveals comprehensive tumour heterogeneity and novel immunophenotypic classification in hepatocellular carcinomas. Gut, 68(11), 2019-2031.
Journal of HepatologyIssue   Date: July 23, 2019IF: 20.582   DOI: 10.1016/j.jhep.2019.07.014
Reference Information
Zhou, S. L., Zhou, Z. J., Hu, Z. Q., Song, C. L., Luo, Y. J., Luo, C. B., … & Huang, X. W. (2019). Genomic sequencing identifies WNK2 as a driver in hepatocellular carcinoma and a risk factor for early recurrence. Journal of hepatology, 71(6), 1152-1163.
European Respiratory JournalIssue   Date: 2019IF: 12.339   DOI: 10.1183/13993003.01609-2018
Reference Information
Wang, X. J., Lian, T. Y., Jiang, X., Liu, S. F., Li, S. Q., Jiang, R., … & Xu, X. Q. (2019). Germline BMP9 mutation causes idiopathic pulmonary arterial hypertension. European Respiratory Journal, 53(3).
Cancer ResearchIssue   Date: 2019IF: 9.727   DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-18-1086
Reference Information
Wang, D., Niu, X., Wang, Z., Song, C. L., Huang, Z., Chen, K. N., … & Wang, Y. (2019). Multiregion sequencing reveals the genetic heterogeneity and evolutionary history of osteosarcoma and matched pulmonary metastases. Cancer research, 79(1), 7-20.
CellIssue   Date: October 18, 2018IF: 38.637   DOI: 10.1016/j.cell.2018.09.038
Reference Information
Hu, H., Mu, Q., Bao, Z., Chen, Y., Liu, Y., Chen, J., … & Sa, J. K. (2018). Mutational landscape of secondary glioblastoma guides MET-targeted trial in brain tumor. Cell, 175(6), 1665-1678.
Nature CommunicationsIssue   Date: 01 March 2018IF: 12.121   DOI: 10.1038/s41467-018-03276-y
Reference Information
Wang, A., Wu, L., Lin, J., Han, L., Bian, J., Wu, Y., … & Wang, W. (2018). Whole-exome sequencing reveals the origin and evolution of hepato-cholangiocarcinoma. Nature communications, 9(1), 1-10.

Data Quality Control

시퀀싱 오류율 (sequencing error rate) 은 딥 시퀀싱 (deep sequencing) 을 통해 저빈도 변이 (low-frequency variations) 를 정확하게 검출하는 데 있어 주요 혼란 요인 (confounding factor) 입니다. 이는 시퀀싱 데이터의 품질을 결정하는 핵심 요소입니다.

시퀀싱 오류율은 시퀀싱 사이클(sequencing cycle)과 밀접하게 연관되며, 시약(chemical reagents)의 소모로 인해 리드(read)의 끝부분에서 점차 증가하는 경향이 있습니다. 이는 Illumina 고처리량 시퀀싱(high-throughput sequencing) 플랫폼에서 일반적으로 나타나는 특징입니다.

Figure 1: Quality Score Distribution Along Reads

참고: x축은 **리드 내 위치(position in reads)**를 나타내며, y축은 **해당 위치에서 모든 리드의 평균 염기 오류율(average error rate of bases of all reads)**을 나타냅니다.



GC 함량 분포(GC content distribution)는 AT/GC 분리 가능성을 평가하는 데 사용됩니다. 샘플 오염(sample contamination), 시퀀싱 바이어스(sequencing bias), 그리고 라이브러리 준비(library preparation) 과정에서 발생하는 오류는 시퀀싱 결과에 영향을 줄 수 있습니다.

Figure 2: Base Composition and GC Content Distribution Across Reads

참고: x축은 리드 내 위치 (position in reads) 를 나타내며, y축은 각 염기 유형 (A, T, G, C) 의 비율 (percentage of each type of bases) 을 나타냅니다. 서로 다른 염기는 각각 다른 색상으로 구분됩니다.




Alignment to Reference Genome

시퀀싱 깊이 (sequencing depth) 와 커버리지 (coverage) 는 이미 알려진 참조 뉴클레오타이드 (reference nucleotides)에 정렬된 페어엔드 (pair-end) 클린 리드 (clean reads) 의 평균 개수를 나타냅니다.


시퀀싱 커버리지 분포(sequencing coverage distribution)는 특정 염기 위치에서 변이(Variations)를 신뢰성 있게 식별할 수 있는지를 결정하는 중요한 요소입니다.

Figure 3: Average sequencing depth (bar plot) and coverage (dot-line plot) in each chromosome

참고: x축은 **염색체(chromosome)**를 나타내며, 왼쪽 y축은 **평균 시퀀싱 깊이(average depth)**를, 오른쪽 y축은 **커버리지(coverage, 즉, 커버된 염기 비율의 비율)**을 나타냅니다.


단일 염기 다형성 (Single Nucleotide Polymorphisms, SNPs) 또는 단일 염기 변이 (Single Nucleotide Variants, SNVs) 는 유전체에서 가장 큰 비율을 차지하는 유전 변이 (genetic variants) 유형입니다. 또 다른 유전 변이 유형으로는 작은 삽입 및 결실 (Small Insertions and Deletions, InDels) 이 있으며, 이들은 길이가 50bp 미만입니다. 코딩 영역 (coding region) 또는 스플라이싱 부위 (splicing sites) 에 존재하는 InDels은 mRNA 전사체 (mRNA transcripts) 및 단백질 (proteins) 의 변화를 유발할 가능성이 있습니다.

Figure 4: The number of SNPs/inDels in various genomic regions.
Figure 5: The number of different types of SNPs/InDels in the coding region.



Advanced Analysis

암 관련 변이 중 일부만이 유전자에 영향을 미쳐 종양 형성(tumorigenesis)을 유발할 수 있습니다.

유의미한 변이율을 보이는 유전자(Significantly Mutated Genes, SMGs)는 배경 변이율(Background Mutation Rate, BMR)보다 높은 변이율을 가지며, 이는 종양 발생 과정에서 양성 선택(positive selection)을 받았음을 시사합니다.

SMG 분석 (SMG analysis) 을 통해 암 발생 (cancer initiation) 및 진행 (cancer progression) 에 중요한 핵심 유전자를 식별할 수 있습니다.
Figure 6: Heatmap of significantly mutated genes (SMGs) across samples.

참고: 상단의 바 그래프 (bar plot) 는 각 샘플의 변이율 (Mutations/Mb) 을 나타냅니다. 중앙의 히트맵 (heatmap)은 샘플별 각 SMG (Significantly Mutated Gene)의 변이 유형(mutation types)**을 보여줍니다.

가로축 (x-axis): 샘플 (samples)
세로축 (y-axis): 유의하게 변이된 유전자 (SMGs)
서로 다른 변이 유형 (mutation types) 은 각기 다른 색상으로 구분됩니다.

히트맵의 왼쪽 바 그래프는 각 SMG에서 변이가 발생한 샘플의 비율 (percentage of affected samples) 을 나타내며, 오른쪽 바 그래프는 SMG의 p-value를 보여줍니다.


Tumor Heterogeneity Analysis

종양 내 이질성 (Intra-tumor heterogeneity, ITH) 은 종양 세포의 이질적인 구성 (heterogeneous composition of tumor cells)**을 의미합니다.

종양 내 이질성과 클론 구조 (clonal architecture) 를 해독 (deciphering) 하는 것은 치료 저항성(therapeutic resistance) 을 이해하는 데 기여할 수 있습니다.

종양 아형의 개수와 구성(하위 클론 체세포 변이)은 체세포 변이의 변이 대립 유전자 빈도(variant allele frequency) 분석을 통해 확인되었습니다.
Figure 7: HC027 Clonality Plot: Variant Allele Frequency and Copy Number Variation

참고: 각 패널의 가로축은 변이 대립 유전자 빈도(VAF, Variant Allele Frequency)를 나타냅니다. VAF가 상대적으로 낮은 변이 클러스터는 하위 클론 집단(subclonal population)을 의미합니다.

맨 위 패널은 복제수(copy number)가 1, 2, 또는 3인 영역에서의 VAF 커널 밀도(kernel density)를 보여줍니다. 또한, 복제수 중립(copy number neutral) 변이에 대한 모든 클러스터의 후방 예측 밀도(posterior predictive density)와 각 클러스터/구성 요소별 후방 밀도(posterior density)를 나타냅니다.

아래 패널들은 각 복제수 영역에서의 리드 깊이(read depth)와 VAF 간의 관계를 시각적으로 표현합니다.

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